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<journal-title specific-use="original" xml:lang="es">La Calera</journal-title>
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<issn pub-type="epub">1998-8850</issn>
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<publisher-name>Universidad Nacional Agraria</publisher-name>
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<country>Nicaragua</country>
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<article-id pub-id-type="doi">10.5377/calera.v18i30.7737</article-id>
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<subj-group subj-group-type="heading">
<subject>Producción de Plantas</subject>
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<article-title xml:lang="es">Detección molecular de Candidatus liberibacter solanacearum (Zebra Chip) en papa (Solanum tuberosum L,) en Nicaragua</article-title>
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<trans-title xml:lang="en">Molecular detection of Candidatus liberibacter solanacearum (Zebra Chip)
  in patato (Solanum tuberosum L,) in Nicaragua</trans-title>
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  Agropecuaria, Nicaragua</institution>
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  Agropecuaria</institution>
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<author-notes>
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<label>1</label>
<p>Ing. Sistemas de protección agrícola y forestal </p>
</fn>
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<label>2</label>
<p>MSc. Fitopatología</p>
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<fn id="fn3" fn-type="other">
<label>3</label>
<p>MSc. Sanidad vegetal</p>
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<fn id="fn4" fn-type="other">
<label>4</label>
<p>Ph.D. Fitopatología</p>
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<pub-date pub-type="epub-ppub">
<season>January-June</season>
<year>2018</year>
</pub-date>
<volume>18</volume>
<issue>30</issue>
<fpage>33</fpage>
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<year>2018</year>
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<copyright-statement>© 2018 Universidad Nacional Agraria</copyright-statement>
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    <license-p>Los artículos de la revista La Calera de la Universidad Nacional Agraria, Nicaragua, se comparten bajo
        términos de la licencia <ext-link ext-link-type="uri"
            xlink:href="http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/">Creative Commons Attribution License</ext-link>
        
        . Las
        autorizaciones adicionales a las aquí delimitadas se pueden obtener en el correo freddy.aleman@ci.una.edu.ni</license-p>
    

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<abstract xml:lang="es">
<title>Resumen</title>
<p>  En el cultivo de papa se han   registrado diversos problemas fitosanitarios importantes por la presencia de   virus, bacterias y hongos. En los últimos años, productores de los   departamentos de Estelí y Jinotega han reportado plantas con síntomas de la   enfermedad Zebra chip ocasionada por la bacteria fastidiosa Candidatus   liberibacter solanacearum. La enfermedad Zebra chip ha causado grandes   pérdidas económicas a los productores de papa del país donde la producción se   desarrolla todo el año. Ante esta problemática el Instituto Nicaragüense de   tecnología Agropecuaria (INTA) junto con la Universidad Nacional Agraria   (UNA) realizó un estudio comprendido entre los meses de agosto 2015 a Julio   2016 con el objetivo de generar información relacionada a la presencia y distribución   de Ca. L. solanacearum en los departamentos mencionados. Se colectaron 162   muestras de tejidos con síntomas de la enfermedad en cuatro localidades de   Jinotega y tres localidades de Estelí durante los tres ciclos de siembra del   cultivo. Las muestras de tejido fueron procesadas y analizadas en el Centro   Nacional de Investigación Agropecuaria y Biotecnología (CNIA-INTA) para   detectar el agente causal Ca.l. solanacearum utilizando los cebadores   moleculares ligados a la bacteria Lso Tx 16/23 y al gen de limpieza Lso adk.   50 muestras resultaron positivas con el cebador Lso Tx 16/23 indicando alta   especificidad para la detección de este patógeno, mientras que con los   cebadores Lso ADK 42 muestras fueron positivas presentando polimorfismos. Se   detectó la bacteria en las zonas de El Tayacán y El Zacatón en el   departamento de Estelí y en el departamento de Jinotega El Mojón, La Palmera   y San Gregorio. El mayor porcentaje de afectación por Ca. L. solanacearum se   presentó en Jinotega con un 52.17% en comparación con Estelí que presento un   22.41% de las muestras colectadas. </p>
</abstract>
<trans-abstract xml:lang="en">
<title>Abstract</title>
<p>Several important phytosanitary
  problems have been recorded in potato cultivation due to the presence of viruses,
  bacteria and fungi. In recent years, producers in the departments of Estelí
  and Jinotega have reported plants with symptoms of the Zebra disease chip
  caused by the fastidiosa bacterium Candidatus liberibacter solanacearum. The
  Zebra chip disease has caused large economic losses to potato producers in
  the country where the production is developed all year. Faced with this
  problem, the Nicaraguan Institute of Agricultural Technology (INTA), together
  with the National Agrarian University (UNA), conducted a study between August
  2015 and July 2016 with the objective of generating information related to
  the presence and distribution of Ca. Solanacearum in the above mentioned
  departments. A total of 162 tissue samples with disease symptoms were
  collected from four locations in Jinotega and three locations in Estelí
  during the three cropping cycles. Tissue samples were processed and analyzed
  at the National Center for Agricultural Research and Biotechnology
  (CNIA-INTA) to detect causative agent Ca.l. Solanacearum using the molecular
  primers bound to the bacterium Lso Tx 16/23 and the cleansing gene Lso adk.
  50 samples were positive with the Lso Tx 16/23 primer indicating high
  specificity for the detection of this pathogen, whereas with the Lso ADK
  primers 42 samples were positive presenting polymorphisms. The bacterium was
  detected in the areas of El Tayacán and El Zacatón in the department of
  Estelí and in the department of Jinotega El Mojón, La Palmera and San
  Gregorio. The highest percentage of affection for Ca. L. solanacearum was
  presented in Jinotega with 52.17% compared to Estelí that presented 22.41% of
  the samples collected.  </p>
</trans-abstract>
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<title>Palabras clave</title>
<kwd>Cebador</kwd>
<kwd> Lso TX 16</kwd>
<kwd>23</kwd>
<kwd> Lso ADK</kwd>
<kwd> bacteria</kwd>
<kwd>
  agente causal</kwd>
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<title>Keywords</title>
<kwd>Primer</kwd>
<kwd> Lso TX 16</kwd>
<kwd>23</kwd>
<kwd> Lso ADK</kwd>
<kwd> bacterium</kwd>
<kwd> causal
  agent</kwd>
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<sec sec-type="intro">
<title/>
<p>La papa es el cuarto
  cultivo sembrado en más de cien países, siendo el alimento básico de los
  países desarrollados (Europa y Estados Unidos), quienes consumen 75 kg per
  cápita anuales. La importancia de la papa radica en que sus tubérculos son
  parte de la dieta de millones de personas a nivel mundial ya que contiene 80%
  de agua y la materia seca está constituida por carbohidratos, proteínas,
  celulosa, minerales, vitaminas A y C que proporcionan una dieta balanceada
  (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref10">INTA, 2004</xref>). La papa se cultiva únicamente en elevaciones que oscilan entre
  700 a 1,300 msnm con temperaturas promedio de 18°C lo que la hace apta para
  su buen desarrollo (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref4">FUNICA, 2007</xref>). </p>
<p>En Nicaragua, la papa representa un cultivo de mucha importancia después de
  los granos básicos y se cultiva en climas templados de Estelí, Jinotega y
  Matagalpa. El consumo per cápita en nuestro país es de 8 kg anuales. Se
  siembran entre 800-1200 ha con una producción que satisface el 35-40% de la
  demanda nacional (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref10">INTA, 2004</xref>). El país importa de 30–40% de papa fresca y
  100% de tubérculo-semilla para cubrir la demanda del mercado (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref4">FUNICA, 2007</xref>).
  Entre los factores que limitan la producción de papa en Nicaragua se pueden
  citar la escasez de semilla, el alto costo, la baja calidad de tubérculos por
  la proliferación de enfermedades y el costo de la aplicación obligatoria de agroquímicos
  para el control de plagas y enfermedades (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref10">INTA, 2004</xref>). </p>
<p>Desde el comienzo del año 2011 en las plantaciones de papa de Nicaragua se
  observó sintomatología de la enfermedad zebra chip causada por la bacteria
  fastidiosa Ca. l solanacearum y con ella la presencia prolífera del insecto
  Bactericera cockerelli este insecto al alimentarse de la planta le transmite
  la bacteria causante de la enfermedad (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref26">Toledo, 2011</xref>). Para este entonces la
  enfermedad había sido reportada en otros países tales México (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref14">Leyva-Lopez et
  al., 2002</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref17">Martínez-Soriano et al., 1999</xref>), Estados Unidos (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref1">Banttari et al.,
  1990</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref13">Lee et al., 2009</xref>), Canadá (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref28">Khadhair et al., 1997</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref12">Khadhair &amp;
  McAllister, 2003</xref>), Bolivia (Jones et al., 2005), Rusia (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref5">Girsova et al.,
  2008</xref>), Australia (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref8">Harding &amp; Teakle, 1985</xref>), Korea (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref11">Jung et al., 2003</xref>), y
  Nueva Zelanda (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref15">Liefting et al., 2009</xref>). En Nicaragua no hay reportes
  cuantificables de las pérdidas a causa de la enfermedad Zebra chip que está
  asociada a la papa, pero las plantaciones han sido gravemente infectadas al
  punto de reportarse pérdidas totales. Según<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref7"> Gutiérrez et al.; (2013)</xref> en
  México la producción de papa ha sufrido pérdidas económicas de 70% a 90%
  causado por esta enfermedad. </p>
<p>Ca. Liberibacter solanacearum es una bacteria que se aloja en los tubos cribosos
  del floema y afecta a distintos cultivos pertenecientes a la familia de las
  rutáceas, solanáceas y apiáceae. A través de estudios filogenéticos de la
  región 16S rRNA se ha encontrado que Ca. L. solanacearum pertenece a las
  α-proteobacterias y está muy relacionada a 4 especies de Candidatus
  liberibacter: Ca. L. asiaticus, Ca. L. africanus, Ca. L. americanus y Ca. L.
  europaeus. Es una bacteria Gram negativa y logra su desarrollo óptimo entre
  27-32°C (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref2">Camacho y Tapia et al., 2016</xref>). Esta enfermedad está caracterizada
  por los síntomas de amarillamiento, clorosis con los bordes de las hojas
  moradas, achaparramiento de la planta, abultamiento del tallos en lugares de
  inserción, formación de tubérculos aéreos (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref9">Hernández, 2012</xref>), también
  numerosos tubérculos pequeños mal formados y de mala calidad, retraso del
  crecimiento de la planta, rotación ascendentes de hojas, entrenudos acortados
  y la proliferación de brotes axilares y en los tubérculos se observa
  decoloración y un ligero rayado oscuro, y cuando se fríen las rayas son más
  dominantes afectando también el sabor lo que hace que lo hace comercialmente
  inaceptable (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref19">Munyaneza, 2012</xref>). </p>
<p>Las técnicas moleculares para la detección de hongos y virus se han
  implementado recientemente en Nicaragua en cultivos de frijol, tomate, cacao
  y papa. Sin embargo, las bacterias fastidiosas como patógenas no han sido de
  mucha importancia en cultivos agrícolas. Es importante para los productores y
  gobierno confirmar si los síntomas pertenecen Zebra, por tanto este primer
  estudio tiene por objetivo detectar la presencia y distribución de Candidatus
  Liberibacter solanacearum agente causal de la enfermedad Zebra chip en el
  cultivo de papa, en los departamentos de Jinotega y Estelí, mediante la
  técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas en
  inglés)</p>
</sec>
<sec sec-type="materials|methods">
<title>
<bold>MATERIALES Y MÉTODOS</bold>
</title>
<sec>
<title>
<bold>Ubicación y periodo del estudio</bold>
</title>
<p>La
  investigación se realizó en el (CNIA-INTA), ubicado en el departamento de
  Managua, km 14.1 carretera norte, 3 km hacia el sur. Localizado entre la
  Latitud: 12°08’36” N y Longitud: 86°09’49” W, con una elevación de 56 msnm en
  el departamento de Managua. Este trabajo se realizó durante los meses de
  agosto 2015 a julio 2016. </p>
</sec>
<sec>
<title>
<bold>Recolección de muestras.</bold>
</title>
<p>Se colectaron 162 muestras de tejido con
  síntomas característicos de la enfermedad en cuatro localidades del
  departamento de Jinotega y tres en el departamento de Estelí en los periodos
  de primera, postrera y apante. Las variedades de papa presentes en las zonas
  de muestreo fueron: Granola, Desiree, Calwhite, Silvana, Picaso, Provento,
  Toluca, Punta roja, Ronaldo, Monte Carlo. Cada uno de los sitios de donde se
  recolectaron las muestras fue geo-referenciado mediante un dispositivo de
  Sistema de posicionamiento global (GPS). Se recolectaron muestras que
  presentaban los síntomas característicos de la enfermedad, los cuales
  consistían en: amarillamiento, clorosis con los bordes de las hojas moradas,
  achaparramiento de la planta, abultamiento de los tallos en lugares de
  inserción, formación de tubérculos aéreos, decoloración en los tubérculos con
  forma de rayado ligero. Las muestras se colocaron en bolsas de papel y bolsas
  plásticas con cierre hermético dentro de una hielera para ser trasladadas al
  laboratorio y fueron almacenadas a -20°C para después proceder a extraer ADN. </p>
</sec>
<sec>
<title>
<bold>Extracción de ADN.</bold>
</title>
<p>Para la extracción de ADN se utilizó el método
  descrito por <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref3">Dallaporta et al., (1983)</xref> con algunas modificaciones. Por cada
  genotipo se tomó 5 mg de tejido vegetal y se colocó en un tubo eppendorf (1.5
  ml). Se agregó buffer de extracción Tris- HCL 100 mM, EDTA 50 mM, NaCl 500 mM
  y 2-mercaptoetanol 20 mM a cada muestra y luego se maceró el tejido usando
  pistilos plásticos estériles hasta homogenizar las muestras. Seguidamente, se
  agregó sulfato dodecil sódico (SDS) al 10% y se colocaron las muestras en
  incubadora tipo baño María a 65°C por 10 minutos agitándola por lo menos tres
  veces. Se adicionó acetato de potasio (3M) a cada muestra para incubarse a
  menos 20°C por 20 minutos, posteriormente las muestras se centrifugaron a
  15,000 rpm por 15 minutos a 5°C. Se extrajo el sobrenadante y se transfirió a
  un tubo eppendorf estéril y se procedió a agregar y mezclar 0.6 volúmenes de
  2-propanol helado, se conservaron las muestras a menos 20°C por 20 minutos y
  las muestras se volvieron a centrifugar a 15,000 rpm por 15 minutos a 5°C. Se
  procedió a extraer el 2-propanol volteando el tubo rápidamente, luego se lavó
  dos veces el pellet en etanol al 70% a 15,000 rpm a 5°C por 5 minutos, se
  secaron los pellets de ADN a temperatura ambiente por 50 minutos. Los pellets
  de ADN se re disolvieron en buffer TE 1 X (conteniendo Tris- HCL (100 mM) pH
  8.0 y EDTA (1 mM) y se conservaron las muestras a menos 20°C para su
  posterior utilización. </p>
<p>
<bold>Identificación molecular de Candidatus liberibacter solanacearum</bold>. La
  amplificación PCR realizada con los cebadores Lso adk fue a un volumen final
  de 20 µl utilizando 5 µM del cebador delantero y reverso (Lso adk F
  5’-GCGCCACACTAACATCTCCTTCC-3´y Lso adk R 5’-CGCAGCAGTATGAGGGCC-3´), 1X de
  buffer, 200 µM de cada dNTPs (10 Mm) y 0.02 U/µl de Taq polimerasa, agua
  libre de nucleasas y ADN. El desarrollo de la PCR se realizó en un
  termociclador Eppendorf bajo las siguientes condiciones: desnaturalización
  inicial 30 segundos a 98°C, seguido de 40 ciclos a 98°C por 10 segundos, 60°C
  por 20 segundos, 72°C por 30 segundos y una extensión final a 72°C por 7
  minutos. </p>
<p>En el caso de la amplificación PCR realizada con los cebadores Lso TX 16/23
  fue a un volumen final de 20 µl utilizando 10 pmol del cebador delantero y
  reverso (Lso TX 16/23 F (5´- AATTTTAGCAAGTTCTAAGGG-3´ y R Lso TX 16/23
  5´-GGTACCTCCCATACGC-3´), Go taq colorless master mix 2X, agua libre de
  nucleasas y ADN. El desarrollo de la PCR se realizó en un termociclador
  Eppendorf bajo las siguientes condiciones: desnaturalización inicial 30
  segundos a 98°C, seguido de 40 ciclos a 98°C por 10 segundos. 55°C por 20
  segundos, 72°C por 30 segundos y una extensión final a 72 °C por 7 minutos
  (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref21">Ravindran et al., 2011</xref>)</p>
<p>En ambos productos PCR, se visualizaron los resultados colocando 20 ul de las
  muestras con 4 ul de 6X loading Dye en un gel de agarosa al 1.2% que fue
  teñida con bromuro de etidium antes de solidificar, el gel se colocó en una
  cámara de electroforesis con buffer TBE 0.5X se corrió durante 90 min a 90
  voltios, y se colocó en un transluminador para verificar la presencia o
  ausencia de la bacteria en las muestras y se registró mediante fotografía. Se
  consideraron muestras positivas a las que tuvieron una amplificación de
  fragmentos de acuerdo a los cebadores utilizados Lso TX 16/23 que amplifica a
  383 pb y Lso adk que amplifica a 770 pb. </p>
<p>
<bold>Distribución geográfica de Candidatus liberibacter solanacearum. </bold>La
  determinación de la distribución geográfica, se geo referencio mediante un
  dispositivo de sistema de posicionamiento global (GPS). Tomando los puntos en
  las plantas con síntomas característicos de la enfermedad.</p>
</sec>
</sec>
<sec sec-type="results|discussion">
<title>
<bold>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</bold>
</title>
<p>
<bold>Presencia de Candidatus liberibacter
  solanacearum con los cebadores Lso TX 16/23</bold>. Se procesaron 162
  muestras de tejido con síntomas de la enfermedad punta morada y mediante la
  PCR se detectaron 50 muestras infectadas con Ca Liberibacter solanacearum con
  el cebador Lso Tx 16/23, representando el 30.88% de muestras colectadas en
  los departamentos de Estelí y Jinotega en los tres ciclos del cultivo. Los
  mayores porcentaje de muestras positivas se observaron en postrera (9.25%) en
  el departamento de Estelí y 8.02% en primera en el departamento de Jinotega.
  El cebador Lso TX 16/23 amplificó un fragmento de 383 pb el correspondiente
  para detectar Ca. Liberibacte solanacearum (<xref ref-type="fig" rid="gf1">figura 1</xref>). Los resultados fueron
  similares a los obtenidos por <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref21">Ravindran et al., (2011)</xref>, obteniendo
  amplificados de 383 pb de la región 16S y 23S rDNA para Ca. L. solanacearum
  en el cultivo de la papa. Por otro lado, se han realizado otros estudios de
  detección de Ca. L. solanacearum en los cultivos de apio y perejil utilizando
  el marcador Lso TX 16/23 obteniéndose como resultado una alta sensibilidad y
  especificidad en detección, superando a los marcadores OA2 y OI2c, que son
  utilizados comúnmente para la detección y diagnóstico de Ca. L. solanacearum
  (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref25">Teresani et al., 2014</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref18">Monger y Jeffries, 2016</xref>).</p>
<p>
<fig id="gf1">
<label>
<bold>Figura 1.</bold>
</label>
<caption>
<title>Resultados positivos con cebadores Lso Tx 16/23 (383pb) en muestras de tejido con síntomas de enfermedad (1-9)</title>
<p>Control positivo (C+) y control negativo (c-)</p>
</caption>
<alt-text>Figura 1. Resultados positivos con cebadores Lso Tx 16/23 (383pb) en muestras de tejido con síntomas de enfermedad (1-9)</alt-text>
<graphic xlink:href="https://lacalera.una.edu.ni/index.php/CALERA/article/download/328/version/299/400/970/539559115012_gf2.png" position="anchor" orientation="portrait"/>
</fig>
</p>
<p>Un segundo marcador fue utilizado para
  la detección de ‘Ca. L. solanacearum. El marcador Lso adk proviene del gen de
  limpieza adk (housekeeping gene adk) de secuencias alineadas de Ca. L.
  solanacearum y asiaticus (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref21">Ravindran et al., 2011</xref>). Un total de 72 muestras de
  tejido infectado con zebra chip fue utilizado para la detección con el
  marcador Lso adk obteniendo como resultado 42 muestras positivas,
  observándose fragmentos de 383, 500 y 770 pb. (<xref ref-type="fig" rid="gf2">figura 2</xref>). Los resultados se
  compararon con los obtenidos por <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref21">Ravindran et al., (2011)</xref> encontrando
  similitud en 9 muestras con una sola banda de 770 pb. Sin embargo, la
  presencia de fragmentos polimórficos con el marcador Lso adk no fue reportado
  en el estudio de <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref21">Ravindra et al., 2011</xref> y <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref22">2012.</xref> De acuerdo a <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref6">Glynn et al.,
  2012</xref>; los genes de limpieza son generalmente utilizados como tipo de
  secuencia multilocus (MLST) debido a que experimentan variaciones relativas
  en la secuencia entre los loci lo cual refleja adaptación de los patógenos y
  son informativos para identificar grupos entre una población dada.</p>
<p>
<fig id="gf2">
<label>
<bold>Figura 2.</bold>
</label>
<caption>
<title>Productos PCR amplificados a 77 pb con los cebadores Lso adk. (C+) indica control positivo (C-) control negativo.</title>
<p>Los números del 7 al 13 corresponden a las muestras colectadas con síntomas característicos de la enfermedad.</p>
</caption>
<alt-text>Figura 2. Productos PCR amplificados a 77 pb con los cebadores Lso adk. (C+) indica control positivo (C-) control negativo.</alt-text>
<graphic xlink:href="https://lacalera.una.edu.ni/index.php/CALERA/article/download/328/version/299/400/971/539559115012_gf3.png" position="anchor" orientation="portrait"/>
</fig>
</p>
<p>
<bold>Distribución geográfica de Candidatus
  liberibacter solanacearum (CLs)</bold>. La distribución geográfica se
  basa fundamentalmente en los informes recolectados de la presencia de
  Bactericera cockerelli quien transmite la bacteria Candidatus liberibacter
  solanacearum (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref16">MAG Costa Rica, 2010</xref>). Mediante los resultados obtenidos de la
  PCR, que se realizó en muestras colectadas con síntomas de la enfermedad en
  los departamentos de Jinotega y Estelí se detectó la presencia de Candidatus
  liberibacter solanacarum en El Tayacán y El Zacatón en el departamento de
  Estelí, mientras en que el departamento de Jinotega en las zonas del Mojón,
  La Palmera y San Gregorio.</p>
<p>
<fig id="gf3">
<label>
<bold>Figura 3.</bold>
</label>
<caption>
<title>Localidades de los departamentos de Estelí y Jinotega con resultados positivos mediante la técnica PCR para Candidatus Liberibacter Solanacearum (Puntos negros en el mapa)</title>
</caption>
<alt-text>Figura 3. Localidades de los departamentos de Estelí y Jinotega con resultados positivos mediante la técnica PCR para Candidatus Liberibacter Solanacearum (Puntos negros en el mapa)</alt-text>
<graphic xlink:href="https://lacalera.una.edu.ni/index.php/CALERA/article/download/328/version/299/400/972/539559115012_gf4.png" position="anchor" orientation="portrait"/>
</fig>
</p>
<p>Los síntomas de la enfermedad se
  registraron por primera vez en los campos comerciales de Texas, México en
  1994 y ha sido reportada en California, Colorado, Kansas, Nebraska, Nevada y
  Nuevo México suroeste de Estados Unidos en el 2000, también se registró la
  presencia en Guatemala, Honduras y Nicaragua en el 2010; en el 2008 se encontró
  que la bacteria estaba afectado los cultivos en nueva Zelanda, Finlandia,
  Noruega y Suecia (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref24">Secor et al 2009</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref19">Munyaneza et al., 2012</xref>). </p>
<p>La presencia de Candidatus liberibacter solanacearum en los campos de papa
  esta correlacionados con la presencia del insecto vector Bactericera
  cockerelli el cual tiene un rango óptimo de temperatura 21-27°C, mientras que
  las temperatura superiores a 32°C perjudica la ovoposición y eclosión de B.
  cockerelli (<xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref20">OIRSA, 2015</xref>). La altura promedio en el departamento de Estelí es
  de 900-1500 msnm, mientras que en Jinotega altura promedio oscila entre
  700-1700 msnm, según <xref ref-type="bibr" rid="redalyc_539559115012_ref23">Rubio et al., (2011)</xref> la población de B. cockerelli
  disminuye con la altura, por tanto a alturas mayores de 3200 msnm no se
  presentan daños significativos económicamente.</p>
</sec>
<sec sec-type="conclusions">
<title>
<bold>CONCLUSIONES</bold>
</title>
<p>Se confirmó la presencia de Ca. l.
  solanacearum en los campos de papa en los departamentos de Estelí y Jinotega,
  resultando ser más específico el marcador Lso TX 16/23 F/R para detectar ‘Ca.
  l. solanacearum. Las zonas con presencia de la bacteria fueron El Tayacán y
  El Zacatón en el departamento de Estelí y en el departamento de Jinotega en
  las zonas del Mojón, La Palmera y San Gregorio. Se sugiere realizar estudios
  adicionales de Ca l. solanacearum en cultivos que no están relacionados con
  las solanáceas como pe ejil, zanahoria, apio y otras hortalizas de altura
  debido a que se ha reportado la presencia de este patógeno en otros países
  infectando estos cultivos.</p>
</sec>
</body>
<back>
<ack>
<title>Agradecimientos</title>
<p>Se agradece el apoyo financiero de las
  autoridades CNIA-INTA para la realización de este estudio.</p>
</ack>
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