Se colectaron cadáveres de H. hampei con crecimiento micelial, en una plantación de café de la localidad de Cerro Tula (8°24´18.17´´ y 81°47´5.51´´; corregimiento de Hato Chamí, distrito de Nolé Duima en la CNB, los que fueron desinfectados superficialmente en el laboratorio de Entomología del Instituto de Innovación Agropecuaria de Panamá (IDIAP) en David, Provincia de Chiriquí, con hipoclorito de sodio al 0.5% durante cinco minutos, y lavados con agua destilada estéril. Seguidamente, estos se colocaron individualmente en cámara húmeda (90 % HR y 25±1°C). Los hongos que se desarrollaron en los cadáveres fueron aislados y sembrados en medio de cultivo Papa Dextrosa Agar (PDA), y codificados. Para fines de comparación, se incluyó en el estudio, el aislado RS-Ij006 (Cordyceps javanica) procedente de la colección de hongos entomopatógenos del IDIAP Centro de Innovación Agropecuaria Chiriquí, David, Chiriquí.

Identificación molecular a través de genes de ADNr. La extracción del ADN genómico de los aislados obtenidos, se realizó en el Laboratorio de Biología Molecular del Instituto de Investigaciones Científicas y Servicios de Alta Tecnología (INDICASAT), Ciudad del Saber, Panamá. Se empleó un kit de purificación de ADN de QuiaGen®. La amplificación del fragmento de ITS por PCR se realizó con los cebadores (primers) ITS5 (5’-GGA AGT AAA AGT CGT AAC AAG-3’) e ITS4 (5’-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3’), usando 30 ciclos de desnaturalización (94 °C por 45 s), hibridación (55 °C por un minuto) y polimerización (72 °C por 45 s). Los cebadores se diseñaron de las secuencias conservadas 18S-ADNr y 28S-ADNr en hongos. Las secuencias de nucleótidos de los fragmentos amplificados se compararon con las secuencias ya publicadas en la base de datos del NCBI (National Center for Biotechnology Information). A las secuencias de ADN obtenidas, se agregó una (RSCj006), previamente identificada, obtenida a partir de Trialeurodes vaporariorum (González et al., 2015). Las distancias evolutivas se calcularon utilizando el método de la distancia p (Nei y Kumar, 2000) y se muestran en las unidades del número de diferencias de base por sitio. Este análisis involucró 18 secuencias de nucleótidos. Todas las posiciones ambiguas se eliminaron para cada par de secuencias (opción de eliminación por pares). Hubo un total de 751 posiciones en el conjunto de datos final. Los análisis evolutivos se realizaron en MEGA X (Kumar et al., 2018).

Características macroscópicas . Los hongos se identificaron morfológicamente a nivel de especie (Seifert et al., 2011). Se obtuvieron cultivos monospóricos a partir de colonias puras de los aislados en medio de cultivos PDA (Leucona, 1996). A partir de los cultivos monospóricos, los aislados se sembraron en PDA, Malta Dextrosa Agar (MDA) y SDA (Sabourad Dextrosa Agar). La siembra se hizo, colocando en el centro de los platos petri, un trozo del cultivo monospórico y se incubaron a 26±1°C en oscuridad. Para cada aislado se utilizaron cinco réplicas por cada medio de cultivo. A los 10 días de sembrado (dds), se registraron las características macroscópicas como forma de la colonia, elevación, aspecto de la superficie y color del micelio. La coloración por el anverso y el reverso de las colonias se estimó siguiendo los códigos de la paleta de color de suelos Munsell (Munsell Color Company, 2000).

Crecimiento radial . Para determinar el crecimiento radial, se colocó un cultivo monospórico en el centro del plato con medio de cultivo y se colocó en incubación a 26±1°C en oscuridad. Para fines de realizar las mediciones de crecimiento, en la parte posterior de los platos se marcaron cuatro radios, sobre los que se hicieron las mediciones, las que se realizaron durante 10 días, iniciando al segundo día después del establecimiento del ensayo. Con los datos obtenidos se determinó la tasa de crecimiento en mm día^-1 (French y Hebert, 1982) para los tres medios de cultivo.

Diámetro de la colonia . A partir de cultivos monospóricos incubados a 26±1°C por 10 días; se midió el diámetro (mm) en dos puntos de la colonia, realizando dos lecturas por cada plato petri.

Tamaño de conidias . Se obtuvo conidias a partir de un cultivo puro de 10 dds, de los hongos del estudio, y se midió el largo y ancho de las mismas, utilizando un microscopio óptico Olympus CX31 con un aumento de 100x. Se evaluaron 50 conidias por aislado y por medio de cultivo, para medir su tamaño en micras (French y Hebert, 1982).

Concentración de conidias . La concentración de conidias se midió a los 10 días, luego del crecimiento radial de las colonias. En tubos Falcon de 15 ml conteniendo 10 ml de Tween 80 al 0.05 % (v/v) se colocaron individualmente tres secciones de 1 cm diámetro del crecimiento esporulado de los aislados. Posteriormente se realizaron diluciones sucesivas hasta la dilución 10^-3. Se realizaron cinco repeticiones por aislado. Se realizó el conteo al microscopio con la cámara de Neubaüer (Neubaüer improved, Marienfeld, Alemania) y se registraron los conteos de conidias producidas (cm²) por cada aislado en los tres medios de cultivo (French y Hebert, 1982).

La capacidad germinativa de los aislados fue evaluada simultáneamente a la prueba de patogenicidad. Se utilizó una concentración de 1x10⁶ conidias ml^-1 y se colocaron alícuotas de 5 µl en siete puntos del medio en platos petri, se incubaron durante 24 horas a 26 °C y se adicionó una gota de azul de lactofenol con el fin de suspender el proceso de germinación y teñir las esporas. Se recortaron trozos del cultivo en los puntos de inoculación, se hicieron montajes en portaobjeto y se procedió al conteo de conidias germinadas y no germinadas en cinco campos microscópicos. La observación microscópica se realizó con un aumento de 40x; los resultados se expresaron en porcentaje de esporas germinadas. Para cada aislamiento se utilizaron cinco cajas de petri por repetición.

Para evaluar la mortalidad y TL₅₀ de los hongos aislados, se utilizaron adultos de aproximadamente 10 días, obtenidos de una cría de H. hampei, establecida a partir de adultos colectados de cerezas de café infestadas naturalmente. La inoculación se realizó por inmersión en una suspensión de 1 x 10⁹ conidias ml^-1 + Tween 80 (0.1%) durante un minuto. Como testigo se utilizó agua destilada estéril + Tween 80 (0.1%). La unidad experimental se estableció con 10 adultos de H. hampei, colocados individualmente en viales de vidrio, donde se les suministró un grano de café pergamino. El ensayo se mantuvo a 25±1°C, en cámara húmeda con agua destilada estéril sobre papel toalla esterilizado. La mortalidad se registró diariamente durante 15 días y los cadáveres se colocaron individualmente en cámara húmeda con el fin de obtener esporulación. El Tiempo Letal Medio fue calculado mediante el método de regresión lineal simple.

Los datos del crecimiento lineal se transformaron a log (x + 1); este y la producción de conidias se analizaron mediante un análisis de varianza y separación de medias con Tukey (α = 0.05%). Los datos de mortalidad se transformaron a arcos(√x/100) y se analizaron mediante una prueba de Kruskal-Wallis (α = 0.05%).

A partir de los especímenes de H. hampei, se obtuvieron 14 aislados de hongos, los que fueron codificados de la siguiente manera: D-Bb1350, D-Pl1388, D-Bb1391, D-Bb1392, D-Bb1395, D-Bb1397, D-Bb1398, D-Bb1399, D-Bb1400, D-Bb1401, D-Bb1402, D-Bb1405, D-Bb1406, D-Bb1412.

Al analizar las secuencias, 13 de los 14 aislados correspondieron 100 % a Beauveria bassiana Bals. (Vuill.) (Accesiones MG548313.1 y MH922794.1). Un aislado se identificó como muy cercano al género Isaria (=Paecilomyces) similar al aislado RS-Ij006 y coincidió 100 % (Accesión KF624800.1) con el género Purpureocillium lilacinum del GenBank. Luangsa-ard et al. (2011), proponen este microorganismo como un nuevo género Purpureocillium y una nueva combinación Purpureocillium lilacinum para el anteriormente conocido como Paecilomyces lilacinus, especie que según Luangsa-ard et al. (2011) cuando es usado en altas concentraciones representa un riesgo para la salud en humanos inmuno-comprometidos. Por lo anterior, este material se debe manejar con reserva ya que se requieren realizar más investigaciones que determinen los factores de patogenicidad en humanos (Luangsa-ard et al., 2011). El aislado RS-Ij006 corresponde a Isaria javanica (Friedrichs y Bally) (Samson y Hywell-Jones (Luangsa-ard et al., 2011) y sus secuencias están depositadas en el GenBank con las accesiones KF373690 y KF373691 (González et al., 2015). Este género, se le ha reubicado recientemente con el nuevo nombre de Cordyceps en una revisión posterior por Kepler et al. (2017). El nuevo nombre de Isaria javanica se indica en lo sucesivo como Cordyceps javanica. Los análisis evolutivos filogenéticos y moleculares de las secuencias obtenidas dio como resultado el árbol filogenético reflejado en la Figura 1. Las relaciones evolutivas de taxones se infirieron mediante el método del vecino más cercano (Saitou y Nei, 1987). Se muestra el árbol óptimo con la suma de la longitud de la rama = 0.66904220. Se observó poca variabilidad entre los aislamientos de B. bassiana. El análisis separó los aislamientos de B. bassiana en un grupo y colocó el aislamiento D-1388 diferenciado de las accesiones Isaria (KF373690 y KF373691) y del aislamiento MK120858.1 Purpureocillium utilizado como grupo externo. Los números de accesión asignados en el GenBank, para cada secuencia de nucleótidos de los aislados analizados en este estudio fueron: MZ151175 (D-Bb1350); MZ151176 (D-Pl1388); MZ151177 (D-Bb1391); MZ151178 (D-Bb1392), MZ151179 (D-Bb1395), MZ151180 (D-Bb1397) MZ151181 (D-Bb1398), MZ151182 (D-Bb1399), MZ151183 (D-Bb1400), MZ151184 (D-Bb1401), MZ151185 (D-Bb1402), MZ151186 (D-Bb1405), MZ151187 (D-Bb1406), MZ151188 (D-Bb1412).

Con relación a la condición de aislados endémicos, por ser colectados afectando naturalmente poblaciones de H. hampei en la CNB, Rehner et al. (2006, p.18), en un amplio estudio filogenético de B. bassiana, establecieron que "la alta diversidad genética detectada en el ubicuo Neotropical AFNEO_1 geográfica y ecológicamente, sugiere que este linaje es endémico y está bien establecido en el Neotrópico".

Figura 1. Figura 1. Análisis filogenético de vecino más cercano (NJ) de la región ITS (ITS1, 5.8S, e ITS2) para especies de Beauveria usando Purpureocillium como grupo externo. Números en las ramas indican valores de bootstrap después de 500 réplicas. MEGA, versión X.

Los hongos aislados se depositaron en la colección de hongos entomopatógenos del Laboratorio de Entomología del Centro de Investigación Agropecuaria de Chiriquí con una réplica en la colección de referencia de hongos entomopatógenos de la Estación Experimental del IDIAP en Río Sereno.

Los aislados de los hongos entomopatógenos correspondieron a 12 aislamientos nativos de B. bassiana (D-Bb1350, D-Bb1391, D-Bb1392, D-Bb1395, D-Bb1397, D-Bb1398, D-Bb1399, D-Bb1400, D-Bb11402, D-Bb1405, D-Bb1406, D-Bb1412) y un aislamiento nativo D-1388, correspondiente a Purpureocillium lilacinum.

La forma, el borde y el color de las colonias resultaron comunes a todos los aislados de B. bassiana. Todos presentaron colonias circulares, borde liso y color blanco (Gley 8/N según tabla Munsell) por el anverso (Figura 2). En cuanto a la elevación, se distribuyeron en tres tipos, desde plana a convexa, con situaciones intermedias referidas a la altura de los bordes y al tamaño de la elevación central. El aislado D-Bb1397 mostró ser variable en cuanto a la elevación ya que algunas colonias formaron anillos más elevados y otras, depresión central con crecimiento de altura irregular (e.g. D-Bb1397). En cuanto al aspecto de la superficie, la mayor parte de las colonias no presentaron irregularidades y sólo algunas (D-Bb1391, D-Bb1402, D-Bb1405) produjeron anillos concéntricos.

La apariencia de los aislados de B. bassiana, por el anverso y el reverso de las colonias mostraron características culturales similares en los tres medios evaluados. Los materiales correspondientes a B. bassiana presentaron un aspecto inicial algodonoso para luego convertirse pulvurulento y superficie semi-elevada, coincidiendo con lo descrito para el género Beauveria por Vélez et al. (2001), y por Rodríguez y Del Pozo (2003).

En el reverso, el crecimiento micelial de B. bassiana fue tomando un color amarillento claro que fue más fuerte (5Y 8/5) en el medio MDA, intensidad media (5Y 8/6), en el SDA y más pálido en el medio PDA (2.5Y 7/8). Adicionalmente se observó la formación de radios en el medio de SDA ligeramente marcados en algunos aislados de B. bassiana (D-Bb1350, D-Bb1398, D-Bb1399, D-Bb1405, D-Bb1406, D-Bb1412).

Figura 2. Figura 2. Características macroscópicas de los aislados del género Cordyceps (A), Purpureocillium (B) y Beauveria (C) en PDA (1), SDA (2) y MDA (3) en el adverso y reverso de los medios de cultivo.

Las características morfológicas de los aislados de Beauveria, correspondieron a lo reportado por Glare e Inwood (1998). Mientras que el color de los aislados de D-Pl1388 (Purpureocillium) en el lado anverso es rosáceo liláceo (10R 7/2), en contraste con el aislado RS-Cj006 (Cordyceps) que fue rosado pálido (10R 5/2); de aspecto friable y superficie plana, crecimiento concéntrico con cambio en la coloración diaria; inicialmente blanca para tornarse rosáceo pálido en 24 horas. Adicionalmente se observó la formación de radios muy marcados en el medio de SDA tanto en el anverso como en el reverso en los aislados D-Pl1388 (Purpureocillium), RS-Cj006 (Cordyceps) y muy atenuados en el reverso de Beauveria (Figura 2). Similarmente en el medio MDA, se presentó la formación de radios menos acentuada en el aislado RS-Cj006 (Cordyceps). La coloración por el reverso según tabla Munsell fueron para RS-Cj006 (Cordyceps): 5Y 8/2 en medio PDA, 10YR 6/2 en medio SDA, y 10YR 5/4 en MDA; y para D-Pl1388 (Purpureocillium): 5Y 8/2 en PDA, 10YR 5/8 en SDA, y 10YR 4/6 en MDA

Los aislamientos D-Pl1388 y el RS-Ij006 mostraron un crecimiento significativamente (p< 0.0001) mayor que los aislados de B. bassiana. El aislado D-Pl1388 fue el que presentó mayor crecimiento con 4.53 mm día^-1 seguida por la RS-Ij06 con 1.93 mm día^-1, mientras que los valores obtenidos por los aislados de B. bassiana estuvieron en el rango 1.1 a 1.62 mm día^-1 (Cuadro 1). El crecimiento lineal es un indicativo de la habilidad del hongo para invadir los sustratos donde crece (Montesinos-Matías et al., 2011), por lo que esta capacidad competitiva se puede considerar una característica deseable.

Cuadro 1. Cuadro 1. Diámetro de la colonia y crecimiento radial de los aislados de hongos entomopatógenos medio PDA

Aislado	Diámetro de la colonia (mm)1/		Crecimiento radial (mm día-1)2/
D-Pl1388	87.97	a	4.53	a
RS-Ij006	42.05	b	1.93	b
D-Bb1392	32.05	c	1.10	f
D-Bb1397	31.66	cd	1.54	f
D-Bb1400	31.62	cd	1.23	f
D-Bb1391	31.33	cde	1.43	f
D-Bb1402	30.66	cdef	1.52	f
D-Bb1399	30.52	cdef	1.61	f
D-Bb1398	30.43	cdef	1.54	f
D-Bb1406	29.46	cdef	1.51	f
D-Bb1395	29.23	def	1.51	ef
D-Bb1350	28.42	fg	1.62	cde
D-Bb1412	26.41	gh	1.57	c
D-Bb1405	25.57	h	1.47	cd
1/CV = 32.73 %			2/CV = 8.17 %

Medias con una letra común no son significativamente diferentes, Turkey (0.05).

El diámetro de las colonias de los aislados de B. bassiana en SDA osciló entre 21.98 mm y 32.1 mm, con un promedio de crecimiento de 27.8 mm. El crecimiento lineal promedio de B. bassiana fue de 1.49 mm día^-1, mientras que para RS-Ij006 (Cordyceps javanica) fue de 1.93 mm día^-1 y 4.53 mm día^-1 para el aislado D-Pl1388 (P. lilacilum) (Cuadro 3). Estos resultados son similares a los reportados por Elósegui et al. (2003), quienes encontraron para B. bassiana, diámetros de la colonia que oscilaron entre 25 mm y 31 mm, y promedios de crecimiento lineal de 1.56 mm a 1.93 mm. De acuerdo con Mugnai et al. (1989), la edad del cultivo y sustrato de crecimiento determinan en gran medida las características morfológicas de los aislados. También se ha reportado que el desbalance entre las fuentes carbonatadas y nitrogenadas es el principal factor que afecta el crecimiento del hongo (Elósegui et al., 2003). Así, cuando las fuentes que aportan nitrógeno (N) en el medio (ejemplo el extracto de levadura) están dos o más veces concentradas con respecto a la fuente carbonatada (ejemplo la dextrosa), se estimula el crecimiento micelial (Jenkins y Prior, 1993).

La mayor capacidad potencial de dispersión se observó en el género Purpureocillium con el mayor promedio (p<0.001), de 4.1 mm día^-1 (Figura 3b), seguido por Cordyceps con 2.12 mm día^-1, mientras que los aislados de Beauveria tuvieron el menor promedio de crecimiento lineal con 1.49 mm día^-1. Estas diferencias (p<0.0001), también se observaron al comparar por género el diámetro de la colonia al décimo día de crecimiento (Figura 3a), se observaron diferencias significativas destacándose el género Purpureocillium con 87.97 mm, seguido por el género Cordyceps con 42.05 mm y Beauveria con 29.7 mm.

Figura 3. Figura 3. Diámetro (mm) de las colonias (a) y crecimiento radial (mm día-1) (b) por género al décimo día de crecimiento.

Tamaño y forma de conidias. Las conidias de los 12 aislados son lisas, globosas a ovoides; de acuerdo con esta forma, tamaño, así como también al raquis en forma de “zigzag”, fueron caracterizadas morfológicamente pertenecientes a la especie B. bassiana (Figura 4).

Figura 4. Figura 4. Conidias(a) y conidióforo en forma de raquis-100x (b) de B. bassiana-40x.

En el Cuadro 2 se observa que el tamaño de las conidias osciló en 1.2-3.0 x 1.0-2.8 µm. Este tamaño es reportado por diversos autores para B. bassiana (Kepler et al., 2017; Glare e Inwood 1998), quienes, luego de comparar diversas cepas de especies de Beauveria, provenientes de diferentes países, concluyeron que las cepas con conidias esféricas y menores de 3 µm de diámetro pueden ser consideradas como B. bassiana (French y Hebert, 1982; Glare e Inwood, 1998, Vélez et al., 2001; Kepler et al., 2017).

Para el aislado D-1388 la variación fue de 4.1-10.2 x 1.1-3.8 µm. y para el RS-Ij006 de 4.8-6.2 x 1.1-1.6 µm; ambas de forma fusoides alargadas. Inicialmente por la forma de las conidias, se encontró coincidencia con lo descrito para el género Cordyceps (=Isaria), sin embargo, el aspecto de la colonia difería con el del aislado RS-Ij006. En la Cuadro 3 se observan los promedios del largo y ancho de las esporas para cada uno de los aislados.

Cuadro 2. Cuadro 2. Dimensiones (µm) de las conidias de los aislados de hongos entomopatógenos caracterizados

Aislados	Largo (µm)		Ancho (µm)			Promedio largo	Promedio ancho
	Mínimo	Máximo	Mínimo	Máximo		Mínimo (µm)	Máximo (µm)
RS-Ij006	4.8	6.2	1.1	1.6		5.46	1.33
D-Pl1388	4.1	10.2	1.1	3.8		6.94	2.52
D-Bb1350	1.7	2.8	1.5	2.7		2.24	2.07
D-Bb1391	1.7	2.8	1.5	2.6		2.23	2.07
D-Bb1392	1.6	2.8	1.4	2.6		2.26	2.09
D-Bb1395	1.9	2.8	1.7	2.6		2.20	2.03
D-Bb1397	1.7	2.6	1.5	2.4		2.23	2.05
D-Bb1398	1.7	2.8	1.5	2.6		2.24	2.07
D-Bb1399	1.7	2.7	1.6	2.5		2.19	2.03
D-Bb1400	1.8	2.8	1.6	2.6		2.20	2.04
D-Bb1402	1.7	2.8	1.5	2.6		2.22	2.03
D-Bb1405	1.7	2.7	1.5	2.5		2.18	2.01
D-Bb1406	1.7	2.6	1.5	2.4		2.17	2.00
D-Bb1412	1.9	2.7	1.7	2.5		2.19	2.03

Con respecto al género (Cuadro 3), se observaron diferencias significativas entre los tres géneros estudiados (p<0.001) para las variables ancho y largo de conidias; siendo Purpureocillium el género que presentó el mayor largo (6.94 µm), seguido por Cordyceps con 5.46 µm y Beauveria con 2.21µm.

Cuadro 3. Cuadro 3. Dimensiones de las conidias de los géneros de hongos entomopatógenos caracterizados

Género	Promedio dimensiones (µm)
	Largo	Ancho
Cordyceps	5.46 a	1.33 a
Purpureocillium	6.94 b	2.54 b
Beauveria	2.21 c	2.04 c

Medias con una letra común en una misma columna no son signiticativamente diferentes, Turkey (0.05).

Los promedios de las concentraciones de conidias de los aislados del género Beauveria variaron de 10.46 a 11.13 x 10¹² conidios cm^-2 sin ser estadísticamente diferentes entre sí (p>0.05), siendo los aislados D-Bb1397 y el D-Bb1392 los que presentaron el mayor promedio, con 11.13x10¹² cm^-2 y el aislado D-Bb1395 con menor promedio de 10.46 x 10¹² cm^-2 (Cuadro 4). Estos valores fueron superiores a los observados para los géneros Cordyceps y Purpureocillium.

Cuadro 4. Cuadro 4. Concentración de conidias producidas (cm-2) de los aislados de hongos entomopatógenos

Aislado	Concentración promedio (cm-2)	Medio de cultivo
		PDA	MDA	SDA
D-Bb1397	11.13 a	9.68	10.16	13.56
D-Bb1392	11.13 a	9.22	10.50	13.67
D-Bb1399	10.94 a	9.66	9.66	13.50
D-Bb1391	10.90 a	9.59	9.87	13.25
D-Bb1350	10.87 a	9.44	9.53	13.64
D-Bb1412	10.83 a	9.43	9.51	13.56
D-Bb1402	10.76 a	8.62	10.24	13.41
D-Bb1405	10.75 a	9.13	9.59	13.53
D-Bb1406	10.74 a	9.15	9.49	13.59
D-Bb1398	10.67 a	9.06	9.54	13.41
D-Bb1400	10.67 a	9.15	9.79	13.07
D-Bb1395	10.46 a	8.06	9.76	13.56
RS-Ij006	2.27 b	1.01	1.99	3.80
D-Pl1388	1.63 b	1.32	1.63	1.93

PDA: Papa Dextrosa Agar, MDA: Malta Dextrosa Agar, SDA: Sabourad Dextrosa Agar / Medias con una letra común no son significativamente diferentes, Tukey (0.05).

El género Beauveria produjo significativamente (p<0.001) la mayor concentración de conidias (10.82 cm^-2) seguido por Cordyceps (RS-Ij006) con 2.27 cm^-2 y Purpureocillium (D-Pl1388) con promedio de 1.63 cm^-2 sin ser los dos últimos diferentes entre sí (p> 0.05). La mayor concentración de conidias obtenida por los aislados de Beauveria, sugiere que esta característica ha sido desarrollada para compensar su relativo lento crecimiento radial.

Cuadro 5. Cuadro 5. Concentración (N° conidias cm-2) de géneros de hongos entomopatógenos

Género	Concentración (N° conidias cm-2)	Medio de cultivo
		PDA	MDA	SDA
Beauveria	10.82 a	9.21	9.79	13.45
Cordyceps	2.27 b	1.01	1.99	3.80
Purpureocillium	1.63 b	1.32	1.63	1.93
CV	7.73 %

PDA: Papa Dextrosa Agar, MDA: Malta Dextrosa Agar, SDA: Sabourad Dextrosa Agar / medias con una letra común no son significativamente diferentes.

En 60 % de los aislados la mortalidad fue superior a 70 % (Cuadro 6). Con base en la mortalidad evaluada a los 15 días después de la inoculación, se determinó que los mejores tratamientos fueron RS-Ij006 y D-Bb1400, con 100 % de mortalidad, seguidos por D-Bb1398, con 98.9 %, indicando la presencia de aislamientos más eficaces que otros.

Al evaluar el TL₅₀ se observó que los aislados D-Pl1388 y RS-Ij006 causaron el 50 % de mortalidad en menor tiempo, con 3.52 días y 3.98 días; seguidos por los aislados D-Bb1350 con 6.58 días; D-Bb1400 con 7.86 días y D-Bb1398 con 8.43 días. Los demás aislamientos requirieron de un tiempo de 11 días o más para eliminar el 50 % de la población (Cuadro 6).

Los aislamientos registraron un TG₅₀ de entre 9.38 y 14.75 horas; siendo clasificados en tres grupos: TG₅₀ corto, para los aislamientos RS-Ij006 y D-Pl1388 con 9.45 y 9.38; TG₅₀ intermedio para D-Bb1400, D-Bb1402, D-Bb1405, D-Bb1398, D-Bb1350, que oscilaron entre 13.97 y 14.12 horas y TG₅₀ largo para los demás, que oscilaron entre 14.68 a 14.75 horas. Según Shah et al. (2005), la velocidad de germinación es una de las determinantes de virulencia más reportadas. Los valores de TG₅₀ que se reportan en este estudio son similares a los reportados por Díaz y Leucona (1995) con aislados de Beauveria colectados en diferentes regiones de Argentina, los que oscilaron entre 12h 10 min y 20h 4 min. Por otra parte, Montesinos-Matías et al. (2011), indican que, una germinación lenta hace a los HEP sean más sensibles a las variaciones ambientales, mientras que una rápida germinación les confiere mayor probabilidad de éxito en campo.

Cuadro 6. Cuadro 6. Mortalidad, TL50 y TG50 de los aislados de hongos entomopatógenos afectando insectos de la broca del café (Hypothenemus hampei)

Aislado	Mortalidad (% a los 15 días)	TL50 (días)	TG50 (horas)
RS-Cj006	100.00	3.98	9.45
D-Pl1388	80.00	3.52	9.38
D-Bb1350	93.30	6.58	14.12
D-Bb1391	63.30	11.61	14.75
D-Bb1392	40.00	17.29	14.72
D-Bb1395	43.30	18.49	14.68
D-Bb1397	53.30	15.05	14.71
D-Bb1398	98.90	8.43	14.05
D-Bb1399	66.70	11.93	14.74
D-Bb1400	100.00	7.86	13.99
D-Bb1402	86.70	11.38	14.01
D-Bb1405	83.30	11.57	14.03
D-Bb1406	70.00	11.73	14.68
D-Bb1412	50.00	16.10	14.74